微生物實驗簡短心得體會

時間：2024-08-03 14:36:44 心得我要投稿

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微生物實驗簡短心得體會

　　當我們受到啟發，對學習和工作生活有了新的看法時，心得體會是很好的記錄方式，這樣我們就可以提高對思維的訓練。那么心得體會該怎么寫？想必這讓大家都很苦惱吧，下面是小編為大家收集的微生物實驗簡短心得體會，僅供參考，大家一起來看看吧。

微生物實驗簡短心得體會

　　微生物實驗簡短心得體會1

　　本學期已臨近尾聲，我們即將告別微生物實驗這門課程，在這一學期，八個微生物實驗中，我們學到了許多知識，這些知識將會陪伴我們一生，下面我們就來通過一些實驗來回顧一下本學期的微生物實驗。

　　我選取的實驗是《環境因素對微生物的影響》，之所以選擇這則實驗是因為這則實驗比較簡單，而且涉及面非常多。首先我們來分析一下這則實驗所涉及到的知識面。環境對微生物生長影響主要分以下幾種溫度：通過影響蛋白質、核酸等生物大分子的結構與功能以及細胞結構入細胞膜的流動性及完整性來影響微生物的生長、繁殖和新陳代謝。微生物群體生長、繁殖最快的溫度為其最適生長溫度。

　　PH：H+影響菌體細胞質膜上電荷性質，微生物吸收物質變化，影響代謝，高濃度H+或引起菌體表而蛋白質和核酸水解以及影響酶和活性.滲透壓：微生物在等滲溶液中可正常生長繁殖；在高滲溶液中細胞失水，生長受到抑制；在低滲溶液中，細胞吸水膨脹，因為大多數微生物具有較為堅韌的細胞壁，細胞一般不會裂解，可以正常生長，但低滲溶液中溶質含量低，在某些情況下也會影響微生物的生長。

　　抗生素：在自然界中普遍存在微生物間的拮抗作用，許多微生物可以產生抗生素，能選擇性的抑制或殺死其他微生物。

　　微生物的實驗其實簡單來說步驟幾乎相同：制作培養基、倒平板、接種微生物、培養、觀察菌種生長情況從而得出結論。本次實驗也是這樣首先制作培養基，在進行倒平板步驟時，對平板環境進行區分，然后進行接種。

　　在進行倒平板的時候，要注意在無菌條件下進行倒置，同時也要保持平板的厚度均勻。

　　在進行菌種接種的時候，選擇合適的劃線方式，一般是選擇Z字形劃線法，注意不要把平板弄破，等到平板凝固后才可以進行接種。接種時也要注意在無菌條件下接種。經過培養后，再觀察最后得出結論。

　　通過一學期的實驗，我越發的明白實驗操作對于結果的重要性。實的.基礎。實驗操作可以說是實驗成功與否的關鍵部分，可是馬虎不得。對于需要團隊合作的實驗，個人認為要有強勢的人員搭檔，不說是精通實驗操作規程，最少也得知道實驗的基本操作，掌握要做實驗的操作方法，這對于后續的實驗無疑是與決定性作用的。對于個人的實驗能力，關鍵還是要看平時的積累，有些實驗操作繁瑣復雜，需要極大的耐心，這些都應該是逐漸培養起來的。最后，簡單談一下自己在微生物實驗室做實驗的心得體會。剛開始的時候，最令我頭痛的就是培養基的配制、消毒滅菌，培養基的配制和消毒與滅菌兩個實驗可以說是微生物實驗的最近本課程，內容有配制培養基、分裝培養基、為下次試驗準備菌種及無菌器材等，內容顯得非常繁多緊湊，需要準備的器材、藥品及用具較多、較雜、較細。

　　最后只能是提前參照微生物實驗教材，將實驗過程中所涉及到的藥品、器材及儀器等統統羅列出來，計算出實驗時大小材料需用的數量，這樣，一方面可以有效避免在實驗準備時遺忘相關物品，另一方面也可為以后同一實驗的準備工作提供依據，使實驗準備工作逐步趨于程序化，從而在有效低實驗準備工作量的同時，最大限度地提高準備效率。還有一點很重要，在科研型實驗室里就不能不說導師和師兄師姐，其實他們才是最具價值的“活文獻”，他們就是實驗室里的參考文獻，活參考書。生物就是一門實驗的科學，其中科研經驗的積累就是一個非常重要的組成部分，導師和師兄師姐的一句話往往可以事半功倍，大幅提高實驗的成功率和效率。總之，為了保證實驗過程高質高量完成，除了實驗準備及實驗過程外，還要求實驗技術人員必須具備相應的素質，實驗操作人員必須具備較扎實的專業基礎、熟練的實驗技能及高度的責任心，在工作中要善于總結，同時還要和理論課老師積極溝通，這樣才能夠真正的學好微生物實驗這門課程。

　　微生物實驗簡短心得體會2

　　這學期的微生物實驗已經結束，這是我第一次接觸到微生物的世界中，以前也只是在書本中學習，但是真正走進它們的世界中是通過這個課程開始的。在開始微生物實驗之前我是以為這個實驗不會很難，但是通過本學期的學習發現這個課程真的'很難。你不僅需要理論知識作為鋪墊，你還需要有嚴謹的實驗精神。

　　第一節課老師給我們介紹了我們本學期微生物實驗的幾個實驗和報告的要求，也讓我們了解了微生物實驗和以往其他實驗的不同。實驗步驟雖然很簡單，但是往往一個微小的細節處理不當也會導致你整個實驗結果的失敗。這個我真的深有體會，我們小組的實驗結果都很不理想。實驗步驟說難也不難，其實無非是先對配置培養液，然后對清洗干凈的試管、培養皿以及配置好的培養液進行滅菌，等滅菌完了就放入無菌室進行細菌的接種，最后將接種好細菌和培養液的培養皿放進恒溫培養箱進行培養。看似很簡單的操作過程我卻狀況百出。我總結了幾點導致這么多次實驗失敗的地方。第一是操作不夠規范，在培養皿中倒入培養液后沒有搖勻導致培養基邊緣開裂，未等瓊脂培養液凝固就倒置導致培養基分布不均勻。第二是理論知識欠缺，沒有等培養液冷卻至40到50攝氏度就倒入培養基然后馬上就接種了細菌，導致細菌已經被燙死。

　　好在值得欣慰的是最后一個自主實驗還是比較成功的。試驗以環境對微生物生長的影響為題設計實驗，我們小組通過PH值，溫度，紫外線照射三個方面進行研究，結果很滿意，很明顯。大腸桿菌在PH值為7時生長最適，在溫度為37℃時生長最佳，紫外線會抑制其生長。

　　不得不承認，通過這次實驗的學習，我們學到了很多，得到了很多，有些是書本上學不到的，只有自己參與了，操作了，才會知道。也要感謝老師對我們的照顧。

　　微生物實驗簡短心得體會3

　　1微生物區系分析方法

　　分別在茯茶“發花”不同階段取樣，采用稀釋涂布平板法，對樣品中的微生物進行分離、純化和計數。

　　1.1分離培養基

　　細菌分離：

　　采用牛肉膏蛋白胨培養基：牛肉膏3g、蛋白胨10g、NaCl5g、瓊脂20g、蒸餾水lO00mL。將上述成分溶解定容，調pH7.2～7.4，分裝，12l℃滅菌20min。倒平板前按50μg/ml的量加入用乙醇溶解的制霉菌素或放線菌酮（起抑制霉菌的作用）。酵母菌分離：采用YPD培養基：葡萄糖20g、蛋白胨10g、酵母膏10g、瓊脂20g、蒸餾水1000ml、pH自然，113℃滅菌30min。

　　霉菌分離：

　　采用PDA培養基：稱取200g馬鈴薯，洗凈去皮切碎，加水1000mL煮沸半個小時，紗布過濾，定容至1000mL，添加20g葡萄糖和17-20g瓊脂并定容至1000mL，121℃滅菌20min。等降溫至55℃左右時，加入氨芐青霉素（或鏈霉素）50μg/ml(真菌分離計數時用以抑制細菌的生長)。或者加入氯霉素或慶大霉素滅菌之前加入。

　　放線菌分離：

　　采用高氏一號培養基：可溶性淀粉20g、氯化鈉0.5g、硝酸鉀lg、磷酸氫二鉀0.5g、硫酸鎂0.5g、硫酸亞鐵0.01g、瓊脂18～20g、蒸餾水1000ml、pH7.2～7.4，121℃滅菌20min。可在盛無菌水的三角瓶中加10滴100g/l的石炭酸（苯酚）溶液和50μg/ml的制霉菌素以抑制細菌和霉菌的生長。

　　察氏培養基(1L)：葡萄糖30g；MgSO4·7H2O0.5g；NaNO33.0g；KCl0.5g；FeSO4·7H2O0.01g；K2HPO41.0g；瓊脂20g(觀察霉菌形態用)，如要分離用需要滅菌后加30U/mL鏈霉素)。

　　其他鑒定用培養基成分及配方參照周德慶《微生物學實驗手冊》

　　1.2計數方法

　　計數方法參照GB/T4789.2-2003《食品衛生微生物學檢驗菌落總數測定》的測定方法。

　　1.3取樣：每隔2天取一次樣，每個樣至少做1次重復，總共取7次樣，為了減少誤差，盡量取同一批樣。盡量保證茯磚茶中微生物種類和數量不發生較大變化，樣品取回后立即進行微生物分離計數。在取樣時要測定發花環境（烘房）里的溫度、濕度，取回樣品后，要測定茶樣的含水量和pH值。其余不做微生物分析的茶樣應立即放在-20℃的冰箱里低溫保存。

　　pH值的測定：準確稱取2.00g茶樣，加50ml蒸餾水，置于150ml三角瓶中，在振蕩器上振蕩浸提20分鐘，過濾，濾液置于100毫升燒杯中，然后用通過標準pH溶液校正后的Backman電子酸度計，測定浸提液的pH值，每個試樣重復兩次。

　　1.4分離、純化茯磚茶中的微生物

　　菌種分離：以無菌操作分別稱取試樣25克，投入盛有玻璃珠及225ml滅菌生理鹽水的500ml三角瓶內，振蕩20min，用無菌移液管吸取1ml菌懸液，加到9ml的無菌水中，然后依次制成10-2，10-3，10-4，10-5，10-6，10-7，10-8等7個濃度梯度的菌懸液，用無菌移液管吸取1ml緩緩注入平板培養基內，稀釋涂布平板培養微生物，密封置于28℃條件下培養，4～5d后菌落長滿整個平板。

　　菌種純化：根據初分菌落的形態特征，用接種針挑取各菌落的'少量菌絲體，接種在事先準備好的PDA瓊脂培養基上(每平板內接種3個菌落)，進行劃線平板培養，菌絲體生長1周后，根據長出的各菌落特點進行篩選和純化，如此反復，直至菌落的生長狀態和形態特征均表現一致時視為單一菌種的菌落。

　　1.5鑒定微生物的種類

　　借助菌落結構和顯微鏡觀察初步判斷微生物的種類，如要進一步鑒定，可通過微生物的生理生化反應和分子生物學深入鑒定。

　　2微生物的分類檢索鑒定方法

　　2.1細菌鑒定

　　細菌鑒定參照《伯杰氏細菌鑒定手冊》(第八版)、《一般細菌常用鑒定方法》、《常用細菌鑒定手冊》作形態觀察和相關的生理生化試驗。(1)形態觀察：個體形態觀察：在顯微鏡下觀察細胞形態、大小；菌落形態觀察：觀察菌落形狀、大小、邊緣、表面、隆起形狀、透明度及培養基的顏色等。，(2)染色：革蘭氏染色法、芽孢染色法等。(3)生理生化及生態特征鑒定；過氧化氫酶的測定、氧化酶的測定、好氧性測定、糖或醇類發酵試驗、葡萄糖酸鹽的氧化試驗、V.P試驗(乙酰甲基甲醇試驗)、淀粉水解試驗、明膠水解試驗、硝酸鹽還原試驗、產生吲哚試驗、H2S產生試驗、石蕊牛奶試驗、酪氨酸水解試驗、精氨酸利用實驗、檸檬酸鹽或丙酸鹽的利用試驗、pH生長試驗、生長溫度的測定以及耐鹽性試驗等。

　　2.2酵母菌鑒定

　　酵母菌鑒定參照《酵母菌的特征與鑒定手冊》和《微生物學實驗手冊》對分離得到的酵母菌進行形態觀察和相關的生理生化試驗。(1)形態觀察：個體形態觀察：無絲營養細胞的顯微鏡觀察、擲孢子的形成和形態觀察、子囊孢子的顯微鏡觀察。菌落形態觀察。

　　（2）染色：美蘭染色法。

　　（3）生理生化及生態特征鑒定：碳源同化試驗、氮源同化試驗、糖類發酵試驗、產生類淀粉化合物的測定、在60%(w/w)葡萄糖-酵母膏中生長測試、在37℃下做生長溫度的測定、脲酶試驗等。

　　2.3霉菌鑒定

　　參照《真菌的形態與分類》和《真菌鑒定手冊》等相關文獻，做相關的生理生化試驗和形態觀察。形態觀察包括：

　　（1）菌落形態觀察：顏色、大小、表明特征、質地等。（2）個體形態觀察：菌絲、子實體、孢子的形態等。

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